答： 老师您好！
我想问一下，有些激素要酸或碱助溶，我那次溶6―BA时因为不太好溶。我就在微波炉里加热了一下结果很快就溶了。我想问的是微波会不会对BA造成破坏？
还有，有没有简单快速的方法检测证明激素的浓度是否配错了？因为同样条件下以前可以长出忌说模现在却不能长出，怀疑是不是激素的浓度是不是配错了。
谢谢您好！几乎所有的物质，温度升高都会增加其溶解度，没有想到简单快速检测激素浓度的方法。长不出愈伤，或者无法重复试验结果是有很多原因的，基本培养基和激素都有可能。

答： 老师您好！
我用的细菌胞外多糖做的凝固剂，添加量是1%，通常都会凝固的，但这次没凝固，PH也在5.5以上后来以加了50%的细菌胞外多糖,再次灭菌还是不能凝固.
我想问老师还有什么原因呢?
谢谢!

答：老师您好！我在种一种豆科植物时本来应在MS上种，可是我没看清种到了加有6-BA的MS上，结果长出的苗都很畸形，还有两个是类愈伤的组织，我就把它们转到我分化培养基结果愈伤业也生苗了，我就是想或许可以通过这种方式诱导愈伤，但是整个过程一直只有6-BA，您说这算是愈伤成苗迹课铱梢哉庋用吗？您好！愈伤组织的发生，并非必须要有生长素类，很多植物材料只要有分裂素，同样能够完成愈伤发生和芽再生。不管培养基配方如何，能得到高质量的苗子就是好方法。

答： 老师您好!
你提到要将大田植物先在空白培养基上培养,让其适应温和的培养环境.那么如何做呢?用种子形成无菌苗,还是像扦插那样,取有芽的茎段,还是其它什么方法?(我做的植物种子不好萌发)
期待老师给一个合适的方法或思路!
谢谢您好!不含激素的空白培养基适合绝大多数植物材料，组培条件下播种，取茎段、或者取叶片都是可以的。

答： 老师您好！
我想问一下在木本植物的愈伤组织诱导上，激素的使用上有没有什么规律？
谢谢！您好！一般来说木本植物的愈伤组织诱导要比草本的难，激素的种类也比草本的更加严格，比如KT、ZT、TDZ也是常用到的。

答： 随着愈伤组织的长大，由于没有导管有些细胞会缺乏营养，形成饥饿胁迫，在一定的激素条件下，就会促使愈伤组织分化出导管，进而分化出芽和根，所以合愈伤组织要达到一定大小才能分化。我想请用老师我的这个猜测是否有道理？
谢谢！您好！愈伤组织开始分化时，由大小不等的细胞开始逐渐形成大小均匀的细胞，保持相对稳定状态。在分化时，愈伤组织的表层和内部都可形成分生中心。芽多发生在愈伤组织的表层，属外起源；但根发生在组织的深处，与整体植株发生类似，是内部起源。愈伤组织的外部形态也随分化而П洌一般由疏松转向紧密。维管的发生与激素有密切关系，生长素浓度和木质部发生之间存在着一种反比关系，低浓度的生长素能刺激木质部的发生。另外，赤霉素、乙烯和糖也是维管发生的影响因素，因此愈伤组织的大小，或者说其代谢影响维管的发生，你说的是有一定道理的。

答：老师好！想问一下体胚发生有哪几个阶段？对激素的要求如何？与愈伤分化成苗阶段在激素要求方面有哪些区别？老师好！体细胞经原胚期、球形胚期、心形胚期、鱼雷胚期和子叶期等阶段最后形成体细胞胚状体。在离体培养下，体细胞胚的发育一般包括两个阶段：第一是愈伤组织的诱导和增殖，第二是胚的形成。第一阶段需要培养在含有生长素的增殖培养基上，通常所用的生长素是2,4-D，浓度范围0.5~1mg/L。在增殖培养基上，愈伤组织的若干部位分化形成分生细胞团，称做“胚性细胞团”，如不改变培养基激素水平，胚性细胞团的数量不断增加，但并不出现成熟的胚。

答：老师好！我在做一种植物的愈伤分化实验时遇上这么一个问题，所用配方中激素浓度为BA2+ NAA0.3，所用基本培养基是N6，两个月后分化出来的多半是玻璃化苗。相对引起玻璃化的主要原因之一BA的浓度过高，我实验中的BA浓度并不是很高，我想有两个原因一个是该植物对BA敏感，内源分裂素含量高，导致BA相对浓度高，另一个原因可能是N6中钙离子浓度低。想请教一下老师的看法。您好！很多研究已经证实培养基中BA浓度和培养温度与玻璃化成正相关，BA浓度越高或培养温度越高，玻璃苗比率越大。高浓度的细胞分裂素有利于促进芽的分化，也会使玻璃化的发生比例提高，但每种作物发生玻璃化的激素水平都不相同，你说的BA2不见得就不高。为了克服玻璃化，适当降低培养基中的细胞分裂素浓度，或者适当增加培养基中Ca，Mg，Mn，K， P，Fe，Cu，Zn元素含量，降低N和Cl元素比例，特别是降低铵态氮浓度提高硝态氮含量，都是有效的方法。

答： 你好老师，我最近研究槭树的组培，可是一直一来都没生长，我想问问你有没这方面的配方？您好！槭树是比较难做的树种，你是通过愈伤途径还是通过直接诱导丛生芽呢？如果直接诱导不可行，可以考虑走愈伤诱导的途径。

答：老师您好！
非常感谢您对我问题作出的回答。但是我还是不太清楚，我们实验室同一批作的转基因，其他组的都开始分化了，但是我的还没有动静，与没有可能和我转进去的基因有关系，比如这个基因是和发育迟缓有问题的，它的分化就应该稍微晚一点。我们所用的分化基是N6+KT10mg/L+NAA0.4mg/L.
请老师指教。
谢谢！您好！我觉得与你转入的基因没有关系，再说现在你也无法确定是否成功转入。你现在做的是抗生素的筛选阶段还是采用的转基因苗来做的实验？我觉得应该从配方和培养基条件上来找原因，这是影响同一个品种分化速度的主要因素 。

答：我在做愈伤试验时，由于愈伤会分泌粘液于是就加了活性炭，结果是愈伤不长，变黑而萎蔫，想有两个原因，一个是活性炭吸附粘液的同时也吸附养分与激素，这种吸附力大于材料本身对营养物质的吸收，结果导致材料饥饿而死，由此想到一个问题，就是外植体是如何吸收培养基中的养分 ，在这中间激素又扮演什么角色，有没有增强吸收力的作用？而材料在加活性炭的培养基中死亡是否也说明这种材料本身活力不大，生长本身就不旺盛？而生长的旺盛度是否与对养分的吸收快慢有关系？您好！非常高兴能够认识您。可以看出您在科研方面有很好的思路，你分析的很好。活性炭的吸附作用是没有很大选择性的，一般激素和营养也会一定程度上被吸附。外植体的生理活性或者说对培养基各物质的敏感性，是有一点滞后的。往往活性强的外植体在自身参与的前提下逐渐对培养樽龀龇从Α＜に卦诖斯程扮演的是指挥棒的角色，到底发挥的怎样与外植体的水平密切相关。

答：正交设计中有一个交互作用的问题，有时候要设交互列，请问老师如何判断该不该设交互列？假如你不知道它们之间有没有交互作用你又忽视了设交互列，试验还有意义吗？正交设计中的交互序列处理，可参考http://bbs.999pcs.com/ppt/%D5%FD%BD%BB%C9%E8%BC%C6.files/frame.htm

答：想问一下老师正交设计中假如要看出因素的影响趋势，是否就应多设几个水平？是不是至少3个？所有的试验设计方法本质上就是在试验的范围内给出挑选代表点的方法。正交设计是根据正交性准则来挑选代表点，使得这些点能反映试验范围内各因素和试验指标的关系。正交设计在挑选代表点时有两个特点：均匀分散，整齐可比。“均匀分散”使试验点有代表性；“整齐可比”便于试槭据的分析。为了保证“整齐可比”的特点，正交设计必须至少要求做很多次（与水平数相关）次试验，往往让人望而生畏。若要减少试验的数目，只有去掉整齐可比的要求。

答：正交设计在一个试验设计中有很多的优势，比如应用在组培中，可以判断出因素影响的主次顺序及显著性、最优方案和各因素的影响趋势，想问一下老师，通过老师的实际经验，是否正交设计在组培中真有这么多的优势，老师对正交设计在组培中应用的看法如何？是不是说在做一个新材料 组培时，假如你不知道影响因素如何，最好的试验设计就是采用正交设计？您好！正交设计作为一个十分有效的数学模型，在很多领域得到了广泛应用。在组培上往往不像工业上那么准确，因为影响植物生长的因子太多。但它的优势还是显而易见的。
正交设计比较适合因子数和水平数少的实验，如果太多而使组合数太多难以实施。因此合理删除不可能的组合是至关重要的，而不是照搬。可以说正交设计给我们提供了科学设计配方的方法，但如何实施需要经验的判断。
在组培中，均匀设计可能更有效，因为较少的组合数和大的水平数量使我们的选择范围和可行性更好。

答：在做分化时分化出很多畸形膨大的玻璃化芽，请问老师它们能继续生长吗？如何挽救这批玻璃化芽让其恢复常态？您好！很多研究表明，控制玻璃化要从培养的环境条件和生理生化方面入手，可以通过降低培养基的水势；减少培养基中含氮化合物的用量；增加光照强度；调整培养温度；降低培养基中细胞分裂素的用量；提高培养基的硬度等。

答：老师您好！
我想问一下您知不知道内蒙地区没作过的蔬菜组培试验有哪些，就是说哪些蔬菜没做过，还有哪些蔬菜在内蒙地区作组培试验比较有意义？

答：老师您好:
我是一个组培工作者.我做的海棠组培苗根部有白色物质,而且时间越长就越多,请问是什么原因.您好，有些组培苗发根后，如果根系生长量较大，时间较长，就会分泌很多代谢物，一般会附着在根系，表现出，根周围培养基模糊有粘感。这种情况最好是及时移栽，或者低温培养。不过要与膨化根相区别。

答： 我用田间苜蓿叶片为外植体进行组织培养，利用长成的无菌苗叶片作农杆菌转化。因为需要大量的叶片材料，所以无菌苗继代了很多次。现在出现了一系列的问题想向您请教。一方面，现在利用无菌苗的叶片能诱导愈伤，但是分化率很低，请问这是什么原因？？这是否与无菌苗继代次数 多有关？另一方面，现在将无菌苗进行扦插，所用的生根培养基没有变化，扦插后发现，连带老叶茎上老叶失绿，叶片逐渐白化，最后凋零。新长出的叶片呈深绿色，叶脉基部出现紫红色，没有活力，。请问老师这主要是缺素症状得表现么？还是与所用材料继代次数太多有关系呢？？您好！经过多次继代以后，植物体内往往会有较大浓度的激素积累，特别是细胞分裂素。细胞分裂素相对较高的情况下，靠分裂素和生长素配比调控的分化趋向就会有所影响，表现出来的可能就是创伤面愈伤细胞形成，但生长量却很小，甚至分化细胞干枯凋零。

答：老师您好！
我是一名学生，正在学习农杆菌介导的水稻转化。我所用的材料是水稻幼胚。我想请教您怎样可以提高水稻愈伤分化率。
谢谢您的指导！您好！提高水稻愈伤分化率的方法，应该从基本培养基选择和激素种类和配比上来考虑。

答：老师您好：
能把开方式组培的材料发到我的邮箱里吗您好！开放组培的资料已经发到您的邮箱，敬请查收。

答：请问老师：
冬虫夏草真菌的培养及分离的过程是怎样的，它适合生长的培养基及培养条件是？您好！对冬虫夏草的真菌培养不是很了解，很抱歉无法给您提供好的建议。

答：
我得愈伤的是颗粒状的，它们先分化绿色颗粒状，但在转入分化培养基时，夹碎成许多小颗粒，有的是绿色有的不是绿色，在这种情况下我想统计一下我愈伤得出芽率但不知道该怎么算？因为每个愈伤组织块可以分出好多小愈伤点。请问老师如何统计愈伤出苗率？谢谢老师！您好！愈伤组织由于具有群体效应，比较小的愈伤颗粒个体在转接后，容易出现褪色现象，再生芽诱导最好选择比较大的接种方式。出芽率一般用平均芽头密度来统计，计算方式平均芽头密度=分化芽数/接种数。

答：老师您好：
我想请教一下：空白培养是怎么培养？还有只加糖和琼脂的培养基怎么配？谢谢您好！空白培养有两种，一种是MS0这样的形式，是不含任何激素的培养基。另一种就是只含琼脂和糖的培养基，比较适合外植体的建立培养。

答：老师：
您好，请问影响愈伤分化成不定芽的主要因素有哪些?常用的激素中哪些比较有效？敬请回复！您好！愈伤组织诱导芽有问题，主要影响因子有两个，一个是激素种类和配比，另一个就是基本培养基的营养配比。常用的诱导芽激素有6-BA，CPPU，KT。

答： 老师您好！
上次问过您的这个问题，分化较快，中部变绿，还有些小的绿珠长出来，我认为这种愈伤组织比较好了，但就是分化不出来，慢慢的还变黄了，请问具体可能是什么原因呢？您好！您说的这种愈伤是比较好的，如果从激素方面找不到理想的答案，可以考虑进行基本培养基的个性化调整。

答：我做一种植物的愈伤继代时，遇上这么一个问题，就是试过好多比例的配方，但都趋于长根（我初代用的是2,4-D,浓度是1.5mg/L）,我想这可能是内源激素太高的原因，但我不知道该如何处理，请老师给支个招。谢谢！您好！确实存在这种问题，有时配方很难解决这种生长趋势。一方面是内源激素的问题，包括自身合成和对激素的敏感度不同，建议最好采用空白培养先稳定一下内源激素的积累，再转入拟定的配方培养基。

答：请问老师一般影响愈伤分化的因素有哪些？又如何来设计分化配方？您好！影响愈伤组织的发生因素主要有：
1、取材部位不同，诱导愈伤的能力和难易度不同。
2、材料的成熟度不一样，愈伤形成的难易不同。
3、激素种类和配比是比较大的影响因子。
4、光照时数或黑暗培养也会影响愈伤的发生。
配方设计一般会参考文献，初步锁定激素种类和浓度范围，然后再用正交、均匀或完全设计方案来设计配方。

答：老师您好:我想问一问我用君子兰的叶片接种的.用MS加2,4-D1和BA0.5已经20多天了没有长愈伤组织.请问老师是什么原因?谢谢您好！不知道您选择的叶片是哪一类，老苗还是种子幼苗？

答：老师您好：
我想问您一下，我们做的是蝴蝶兰，最近出现瓶苗黄化现象，不知是什么原因，跟光照和蔗糖有关系吗？谢谢。您好！组培苗部分叶片黄化，在很大程度上是与培养基有关。据我们的经验，添加有机附件物，有时会出现不同的生理反应。特别是香蕉，市面上的香蕉一般采用了乙烯催熟，如果买到用量较大的香蕉，乙烯残留也会造成黄化。光照和糖类影响不明显。可以做个实验，就会发现，不加有机眉游锏呐嘌基，尽管生长量上有差别，但材料不会出现黄化等现象。

答：请教老师,防止组培污染的山农一号的价格是多少?如何购买? 还有就是具体用途？因为我只是在网上看到，我对山农一号还不是很了解,您能否发到我的邮箱，谢谢。您好！关于山农一号的资料已经发到您的邮箱，敬请查收。

答：请教老师，我配的培养基高压后，颜色会有点黄黄的，不够白，为什么，会有影响吗？您好！培养基变黄如果不是琼脂粉质量的问题，就是高压灭菌时间过长，或者压力太高，灭菌过头。另外大容量灭菌器，有时会出现灭菌不均匀，造成部分培养基变黄。

答：老师，您好：
我们组培室的培养室最近霉菌污染特别严重，是否因为到夏天这个季节的缘故啊？
是否需要在培养室喷一些比如双氧水之类的杀菌剂？
谢谢！您好！夏天由于温度高、湿度大、接种人员、接种器具带菌的机会比较大，往往会有高的污染率。解决办法就是要严格接种程序、搞好人员的自我卫生、同时对环境进行比较彻底的灭菌和保持。经常采用双氧水、洁尔灭进行空间和地面的灭菌，同时在晴朗的早晨进行室内循环放风等，都能玫浇档臀廴镜淖饔茫污染防治必须综合考虑各个方面。

答：老师您好：
我想请教一下：在配培养基时需要定容和调整PH值，但若在烧杯里配制的话调PH值容易，但定容不精确；若在容量瓶中定容精确但不好用PH计调值，且还不能加热使琼脂融化，请问你们在这方面是怎么做的？
谢谢！您好！可以先用容量瓶将塑料量杯重新定容，即标线重订，就可以解决了。同时很希望与贺老师这边多合作。

答：老师我想问以下组培时为什么会形成愈伤组织您好！愈伤组织是植物材料创伤面的扩展，是细胞分化的直接体现。离体条件下具有创伤面的材料，在激素条件适宜的培养基上，很容易分化增殖，既愈伤细胞的形成。

答：老师您好；
在培养室和培养箱中在做组织培养时哪个相对比较好些，我们所没有组培室，请问在光照培养箱中培养有没有什么影响？


谢谢！贺老师，您好！光照培养箱的环境是比较容易精确控制的。与培养室相比，我觉得可能在菌类控制和气体条件上有差别。培养室是大环境，可以整体灭菌，也可以通风改善。但培养箱往往无法完成，进行小量的组培，培养箱是可以解一时只需的。

答：组培瓶里面好多水珠,可透气也不差啊!

我们也用过三角瓶,只用单层的塑料(带透气膜)进行包装,里面水汽仍然很多,不知道怎么回事?

麻烦老师指教!您好！组培瓶里湿度（水珠）的高低，有几个影响因素。1、培养基的质量。2、瓶子本身的透气性。3、环境湿度。

答：我们这里的蝴蝶兰污染很高,请问老师如何能降下来,污染是多少才算正常?您好!不管是什么组培，污染率的控制都十分关键，他直接决定着生产的成本和生产计划的实施。一般来说5%应该是个底线。一个培养室经过科学控菌，接种程序和培养环境注意，是能够达到理想效果的。一旦污染率很严重，就需要从整个组培环节来找一下原因，针对性解决。

答：老师：
请问如何配制酒石酸铁溶液？您好！FeSO4·7H2O:酒石酸钾钠(含4个结晶水)=1:5,加蒸馏水溶解后,配制方法与Fe-EDTA方法相同,定容所需体积即可。

答： 老师您好!
我想请问一下,外植体用2,4-D 2mg/L直接诱导出了体胚,也就是体胚的直接发生,那么我该如何直接在培养基上(不依赖于新的外植体)增殖体细胞胚呢?
期待您的回复!谢谢!自由分散而高度液泡化的细胞，一般不具有胚胎发生的能力，成簇存在的体积小而胞质致密的细胞才具有成胚的潜力。此时也是继代增殖的最佳时期，一般成胚后，经过连续含有生长素的培养基继代，能够回复。

答： 老师您好,
为了增加繁殖系数,我想知道通过什么方法将胚性愈伤转化为非胚性愈伤?
敬请回复!您好！胚性愈伤是增殖的最好阶段，当把胚性愈伤转接到不含生长素的培养基就会形成胚状体，胚状体一旦形成，如需继续继代增殖可以再转入含有生长素的培养基，继代几次就会一定程度上失去成胚能力。

答：我在做刺五加的愈伤组织的诱导,激素比例试过好多,但是愈伤还是没有出来,嫩叶也在变黄-褐色进而死亡.请问老师有什么好的改进方法没有?谢谢您好！不管是做什么东西，直接从大田取材接入诱导培养基都是不合理的。为了让材料适应组培条件，给他提供一个比较温和的培养基条件是重要的，因此最好采用过度培养法。也就是常说的空白培养，将材料灭菌后，接入到不含激素的空白培养基中，可以是基本培养基，也可以是只加糖们碇的培养基。这样当材料成活后再进行诱导培养是比较好的。

答：老师您好:
请帮忙解答一下MSG和LP培养基配方?万分谢谢!!!!您好！很抱歉对这两个配方不了解。

答： 老师您好！
我做的三角梅两个多月了，愈伤组织长得很好，中不变绿了。转分化培养基一个月后还不见芽分化。请问是什么原因啊？该怎么做呢？您好！不知道您对愈伤组织好坏的评价标准是什么呢？愈伤组织的好坏直接决定不定芽发生的难易程度。一般来说呢，生长速度快，致密紧实的愈伤组织容易再生芽。

答：谢谢老师，麻烦解答一下

蝴蝶兰组培时,增殖转入生根或壮苗,叶片总是发黄?具体是老叶黄的比较多,看到你以前对其它同学的解答,说是消毒引起的培养基不稳定等复杂因素.

想请教一下, 与EC值有关吗? 因为壮苗和生根培养基中加入香蕉,PH需要加大量NaOH,例如:1升 养基最多时加入2ML的1N NaOH.

看资料Na对EC值影响很大, 麻烦您指教
您好！蝴蝶兰组培时,增殖转入生根或壮苗,叶片总是发黄，是植物材料对培养基不适的最直接表现。培养基不稳定的因素，除了有机添加物的不稳定性（品种、成熟度、用量等）造成配方效果的可重复性较差之外，还有一点就是您说的调整PH值会需要大剂量的NaOH,Na离子过多也是一个值得关注的问题，因为Na离子可能会形成一定程度的盐害症状，即黄化。生产中常用KOH来调PH以避免这个问题。.

答：老师:
您好!
我在做小麦茎尖丛生芽的诱导试验发现玻璃化现象非常严重,有的品种达到50%,我想请教您如何控制和减少这种现象?谢谢您好！禾本科的植物材料是由玻璃化严重的情况，建议采用N6培养基，因为其成分较简单，KNO3和（NH4）2SO4含量高，已广泛应用于小麦、水稻及其他植物的花药培养和其他组织培养。
另外，控制玻璃化要从培养的环境条件和生理生化方面入手，可以通过降低培养基的水势；呱倥嘌基中含氮化合物的用量；增加光照强度；调整培养温度；降低培养基中细胞分裂素的用量；提高培养基的硬度等

答： 老师您好:
我做刺五加组培时,用B5+2 2,4-D用茎,结果外植体膨胀,并将皮胀破,结果还用这个培养基继代,几天就褐化了,这是怎么回事呢?
敬请回复!您好！材料褐化是常有的事情，可以采取一些措施来防治。但您说的胀破是什么意思呢？

答： 老师您好,我想问一下:
水解酪蛋白使用前是否不要专门用酸或碱水解一下?如何做?您好！水解酪蛋白有酸水解和碱水解两种，组培中常用的是酸水解酪蛋白。很多组培厂都是直接称量添加的，因为在培养基的酸性条件下，经高压灭菌是可以很好分解，形成各种氨基酸的。但一定要注意高压后培养基的PH变化到底怎么样，然后确定PH调整的适当范围。

答： 老师你好，我在做一种木本植物快繁，现在得到了一些愈伤组织，但是都长不大，最大块的直径也只有0.5厘米左右，而且长到一定程度都在愈伤组织表面长出了棕黑色的物质
我的培养基配方是MS+2,4D4+NAA0.5+BA1您好！首先应该分清楚材料是褐变还是细胞老化死亡。如你所说愈伤组织很小，并不长大，这明显是细胞老化所致。您提供的配方实在看不出有什么道理，MS+2,4D4+NAA0.5+BA1，首先2，4-d这么高浓度在高温分解后会对培养基造成很大的改变，从细胞分裂素和生长素的用量来看，明显都高，从比例来看也不是很好的配方。建议降低24-d用量，不用NAA，将BA的浓度降到0.5一下。

答：老师你好！
我们的安树继代苗生长得很慢，不懂是什么原因？很想知道？您好！组培苗分化很好，而不能抽高，与植物本身的种性是有很大关系的。有时是很难解决的，但可以考虑降低分化系数，利用赤霉素，添加有机附加物等措施以缓解。

答：你好请教 君子兰可以组培成功吗？不是用胚轴是用其他生长点。


如可以你们能组培我来购买你们的组培苗或技术可以吗？您好！君子兰组培技术是比较成熟的，如果您有好的品种，我们可以给您订单生产。

答：老师:
您好!我在培养的过程中,突然就有一批苗出现红化的现象,主要是茎和茎尖.有时候只是茎尖红,叶片到是很少出现这样的情况!请问是什么方面的原因.敬请回复!谢谢了。很急!您好！很抱歉这么长时间都没有给您回复。从你的描述来看，是茎尖和茎段红化，而老叶没有这个现象，其实红色是花青素积累的外在表现，从生理角度来看就是对逆境的生理性反应。其中一个原因就是糖分过多，温度过高，光照时间过长都有可能导致这种现象。还有一个很重要的原因，檬桥嘌基呈中性或碱性，造成微量元素，特别是铁、锰、铜、锌的相对缺乏，随着继代次数增加，就会突显红化现象。

答：请问老师知道 LP培养基的配方么很抱歉，没有这个培养基的配方。

答：老师好：
我做农杆菌介导的番茄转基因的一年多了，用子叶做外植体，抗生素筛选后存活下来的愈伤分化后一直有玻璃化现象。愈伤长出来都很硬很绿，分化出芽只长叶子，没有茎，且大多玻璃化（硬，脆，畸形）。考虑到很多因素：
1.激素配比 ZT:2mg/l IAA:0.1mg/l 现 准备换为ZT:1.5mg/l 不加IAA；
2.琼脂用量 先是Agar Bacteriological Grade-Plant Tissue Culture Tested: 8g/l。后来改用实验室做水稻用的Phytagel( 水稻长很好)：4g /l
相关文献有用TC Agar 8g/l; Gelrite 3g/l; Phytagar 8g/l
3.蔗糖用量：灭菌前加30g/l

另外，对阳性对照的愈伤进行GUS染色从来没染出过 不知道是不是愈伤太硬了，染色液无法渗入，还是都是假阳性。以前曾经试过用下胚轴做外植体，长出的愈伤很软，GUS染色一半以上都成阳性。

希望老师能尽快帮忙解答，先谢谢了！！！您好！如你所说，愈伤致密、玻璃化、变脆、无再生芽能力、无法形成带茎苗。建议有两个：
1、将再生芽转到空白培养基上，同时采用生长量繁殖。
2、将PH调高之6.5左右。

答：老师您好，现在是夏天我想做细胞融合方面的试验，在做之前要做愈伤组织的诱导，请问这样的高温天气对试验有什么影响吗您好！不知道您是不是想通过愈伤组织来获得原生质体呢？愈伤组织生成阶段对环境条件的要求并不是特别严格，但一般维持在25度一下，伴随暗培养。获得愈伤细胞后，再进行原生质体的分离和培养。

答： 你好，我想了解一下有关组培室的方面的事情，我们研究所新筹建了一个小型的组培室（大约有20平方米左右）可是我对组培不是很了解，不知道在布局方面有没有什么严格的要求，还有必须具备的仪器和试剂，（主要是布局方面），您能否提供一下相关的信息，谢谢您好！20平米的组培室是很难有比较合理的安排，我觉得能做的就是把培养基制备室分离出来，简单隔断就行，然后接种室和培养室可以在一起。如有其它需要可以电话联系0531-82373319

答：请问老师：组培苗较扦插苗和实生苗容易水培。您好！应该说组培苗。特别是生根组培苗，直接水培就可以。

答：老师：
您好，请问哪些激素必须过滤灭菌? GA,KT必须要过滤灭菌吗？

敬请回复！谢谢！您好！激素在灭菌过程中并非全部失活，因为激素的作用机理除了激素本身形式下的分子状态，其分解产物也是有效的。如果说失活率70%，那仍有30%的有效性。所以只要考虑损失部分，是可以不通过过滤灭菌的。

答：前段时间我的试验初代培养污染很严重，如果开设污染上传图片的话，我想提供些图片，通过什么途径？您好！非常感谢您一直以来对我们的关注、信任和支持。如果有好的图片，可以到论坛发布。大家共同来交流学习。

答：老师您好：
我的组培接种室有20平方米，请问最好要用几盏紫外灯？
如果用一盏消毒，要多长时间？培养室用紫外灯消毒会不会影响苗的生长？
我的培养架是50厘米宽，层间45厘米高，请问光照度能达到多少勒克斯？
山农一号我已受到，看了很有启发啊！您好,20平方米接种室，用两盏紫外灯就可以了，紫外灯消毒，一般在接种前20分钟启动。由于紫外灯的穿透能力很弱，培养室用紫外灯消毒基本上不会影响苗的生长，但在近距离长时间照射下，也会出现伤苗现象。培养架50厘米宽，层间45厘米高，普通日光灯，中间20cm处，不会超过2000lux，周边可能在1200lux以下。若采用组培专用灯，中间可达到3000lux，周边也在1500以上。山农一号只要按照说明书使用，效果还是相当不错的，祝你成功。

答：老师您好！
最近我们把半夏转接到1/2MS+(0.3mg/l)IBA+(0.01mg/l)NAA+(0.5g/l)AC+(30g/l)蔗糖的生根培养基中，过几天就发现叶子都枯掉了，请问这是什么原因，该怎么解决？非常感谢！您好！从您的描述来看，我觉得主要是培养基渗透势不太适合，高糖，又加入了活性炭，渗透势对于低激素水平下太低，建议降低糖的用量到20g以下，激素水平提高。由于也没有做过半夏，此建议仅供参考。

答：您好，我想购买山农一号，可以发些这方面的资料给我吗？谢谢！您好！山农一号和开放组培的资料已经发到邮箱，请查收。

答：我培养的石斛组培苗，大约在培养一个月的时间左右，组培苗就会出现水渍状褐化，请问这是什么原因造成的？如何解决？
培养基为MS，PH为5.6，琼脂粉4.5克您好！建议看一下是不是透气不是很好，瓶壁的水珠是否很多？

答：有一些药品,比如抗生素之类不能用高压来灭菌,通常用过滤法来灭菌,想问一下老师,可以用液氮冻融法来灭菌吗?就是用液氮反复冻-融三次.您好！您这个提法非常好，超低温对蛋白质的变性研究在医学界是常用的，细胞在超低温下，反复冻融，变性失活是有据可查的，可以尝试一下。

答：我想问的是2-4-D浓度对茎尖诱导愈伤组织的影响，我们要做一个正交实验，需要不同的2-4-D浓度，所以想知道一般最适合诱导愈伤组织的浓度是多少，还有一些其他的浓度可以实验一下的～～谢谢～～您好！关于实验设计是需要参考众多文献的，通过阅读，基本判定其浓度范围，然后在进行合理的设计。

答：老师你好，我先问一下，球根花卉组织培养的特点是什么？您好！球根花卉根据其形态和来源分为：(1)鳞茎。如郁金香、朱顶红、水仙等。(2)球茎。如:唐菖蒲、番红花、小苍兰等。（3)块茎。如马蹄莲。(4)块根。(5)根茎。如美人蕉、鸢尾。
这类花卉共同点有：1.外植体处理难 2.大都需要高低温启动诱导 3.生根率低 4.退化迅速，需要脱毒处理
因此，需要根据其球根的差别，适当选择外植体材料，谨慎灭菌，高低温诱导启动，同时注意生根率的问题。

答：请问老师，我05年接种的郁金香在这个月产生了种球，可下一步因该怎样管理那？您好！郁金香试管人工种球的繁殖的主要问题就是，繁殖系数与生根的难度。当小鳞茎形成后，如何诱导成大鳞茎，并能成功生根是关键。只有生根的大鳞茎才能有比较高的移栽成活率，期间主要是靠培养基中营养成分和激素的调控。

答：培养基出现黄色菌落,边缘光滑,凸起,是什么 怎么控制 谢谢老师.!您好！您说的这种是组培中常见的细菌性污染，是粘质菌。如果从材料底部外翻生长突起，说明您的接种器械灭菌不彻底，或者培养材料灭菌不彻底。

答：老师你好
我想知道DCR培养基配方
我的邮箱是songfei8253@126.com
谢谢

答：老师你好，我想请教一下一般木本植物丛生芽的诱导主要是通过什么外植体的.我现在建立一种樟科植物的快繁体系，现在已经得到了大量的愈伤组织，可是网上的关于丛生芽诱导的大部分资料都是从芽或者是茎段来诱导的，很少有经过愈伤组织的，所以我想请问下，他们的那些培养基配方对我有没有参考价值，木本植物从愈伤诱导丛生芽是不是很困难?
谢谢老师！您好！木本植物有很多通过茎段可以快速的获得丛生芽，通过什么方式获得丛生芽是有选择性的，如果植物材料顶端优势特别明显，腋芽萌发能力强，就可以直接用茎段诱导丛生芽，如果材料的顶端优势不明显就可以采用其他部位（叶片，叶柄等）来诱导愈伤，然后形成丛生芽。

答：老师你好!
我的樱桃启动培养都开始玻璃化,你能给我提供一个启动培养是用的配方吗?
万分感谢!您好！我们一直做着樱桃砧木的组织培养，不知道你是做的品种还是也是砧木？

答：老师您好：
请教LS培养基配方。非常感谢！您好！LS培养基RM-64[Linsmair & SKoog(1964))]
1．无机盐 NH4N03 l650mg／L
KNO3 1900 mg/L
CaCl2•2H2O 440 mg/L
MgSO4•7H2O 370 mg/L
KH2PO4 170 mg/L
Na2-EDTA 37.3 mg/L
FeSO4•7H2O 27.8 mg/L
H3BO3 6.2 mg/L

答： 老师你好！好像几天没见你了！是不是生病了？要注意身体呀！我们还有好多问题要向你请教那！还是太忙了！？希望你能尽可能的忙中偷闲来帮帮我们这些饥渴的组织培养的后辈们！
谢谢！
望老师健康，快乐！您好！谢谢您对我们的关心。最近主要是忙着申请一个项目，没有充足的时间来回复，请谅解。

答：老师你好：
我是做衫木管理的，衫木苗生产需要很长的关照时间，现在有人直接把继代和生根衫木苗放在用透明玻璃建厂房在里面吸收太阳光来培养。这样一来可以省去用日光灯所带来的高额电费。我讲问这种做法对衫木生长会不会影响啊。您好！采用自然光培养，特别是在生根壮苗阶段是很有效的，既能节省电费，又能使植物材料适应移栽炼苗的环境。但 在培养中，一定要注意遮阳和温度的控制。

答：老师：
您好，能把开放式组培发到我邮箱里吗，谢谢
　
　
您好！关于开放组培的资料已经发到您的邮箱，敬请查收。

答：老师，您好！我想问下组织培养外植体在接种前冻存的目的是什么？有没有什么限制？您好！外植体的冻存还有接种后的高低温过渡培养，在组培中是常用的方法。究其原因我觉得是为了激发植物的感受状态，特别是在高低温交替过程中，植物组织细胞对培养条件的快速感受，也就是细胞的活跃程度，这样才能够快速启动。一般来说，在外植体冻存时是0-4度，而在接种后则是18度左右。

答：组培瓶用的通气片您好！组培透气膜有两种一种是14cm的，一种是16cm的 。如有需要请拨打销售部电话0531-92373319/20

答：老师：
你好，在配制培养基时，有时需要加入椰乳，请问是它是如何配制的，能否经高温灭菌，如何加入到培养基中！还有，香蕉泥，马铃薯汁等这些附加物都是如何制备的？感谢老师给我回答！您好！关于有机附加物的制备，只要看选材和灭菌。一般来说为了保证其有效性，选择新鲜的材料，以保证内含物的有效性。如果能够每次现做现用，是最好的，但如果一次用不了，也可以高压灭菌后制成母液冰箱保存即可。

答：老师你好，外植体灭菌的时候除了各种不同的常规灭菌剂的时间浓度和种类的调配外！还有没有别的处理方法可以减低污染！？谢谢！
老师你好！我的邮箱是xinko6666@tom.com 我有个不情之请，能不能告诉我你的邮箱！遇到什么问题直接给你发电子邮件！ 也同时希望能和广大组织培养同道中人共同切磋组织培养方面的问题！您好，非常高兴能够认识您。我的邮箱是vcg2000@163.com，也可以直接发到webmaster@zupei.com，我们的专家团队会给您满意的答复。
外植体灭菌分为浅灭菌和深灭菌两个环节。外植体的成功率主要看深灭菌。一般来说增强灭菌溶液的渗透能力是比较关键的，比如采用1/4MS矿质钏厝芤豪磁渲泼鹁溶液。另外超声波振动灭菌等，都会一定程度上增加深灭菌的成功率。、
另外，采用培养基添加内吸性的抗菌药剂也是不错的做法。

答：我现在刚学组培 想找种材料练哈手，什么材料比较合适呢？我以后准备做大花蕙兰的组培。现在找什么材料练手比较合适呢? 谢谢老师。您好！非常抱歉，没能给您及时回复。要说组培练手，最好选择比较容易的草本植物，这样既能完成组培技术的全面练习，也能够增强初做组培的信心。做大花蕙兰，技术相对复杂一点，但整个技术环节大同小异，主要是培养基的筛选，我们一直在做大花蕙兰，可以进一步深入交流。

答：老师，我现在鸢尾的组培技术已经很成熟，而且有规模化生产的能力，炼苗成活率也相当高，能在短时间内提供大量组培苗。我怎么样才能让它融入市场？您好！一个完整生产运作计划的制定应包括增殖品种、计划数量、上市时间、销售策略等几方面。
如你所说，组培苗繁育技术体系的建立，在市场化运作中是关键，但在技术体系成熟后，如何融入市场才是重中之重。
进行工厂化组培快繁生产种苗的产品，是一类特殊的鲜活产品，其有效商品价值期较短暂。只有较好地解决了生产品种不对路，产品数量与市场需求脱节，销苗旺季无苗可销，淡季又大量积压等问题。尽量减少不必要的成本浪费，提高产品的有效销售率，才能在市场中占有较大份额，并赢得较高的信誉，使企业产品具有竞争力。