有效的培养方法
诱导培养基 MS+BA 0.5mg/L+2，4-D0.8mg/L。
增殖培养基 M6+BA 2.5mg/L+2,4-D0.1mg/L。
生根培养基 1/2 MS+NAA 0.5mg/L。
2、培养程序
（1）取材 应在品种纯正、花大色艳的单株上进行。一般采用刚展开的幼嫩叶片作为外植体效果较好。
（2）灭菌 将叶片放在盛有洗洁精的烧杯中搅拌10min后，用自来水冲洗15min，除去洗洁精表面污物，接着在无菌条件下，先用75%的酒精消毒30s，再在0.1%的升汞溶液中浸沟8~10min，无菌水洗5~6次，将叶片切成1.5cm2的小块，接入诱导培养基。
（3）生长及分化 叶片在诱导培养基中培养约1个月后，切割处便出现少量的淡黄色愈伤组织，2个月后，叶片愈伤组织的诱导率可达到83.3%。将愈伤组织块转移到分化培养基中继续培养，60d以后平均每块愈伤组织可分化4.94个不定芽。
（4）生根培养 当不定芽长到2.5~3.0cm，具有3~4片叶时，可将其切成单株在生根培养基上进行生根培养，30d后即可长出3~4条根，生根率可达100%。
质量标准及调控技术
红掌愈伤组织的诱导及形成十分缓慢，接种20d后，叶片仍为绿色，1个月后，叶片切口处才会出现少量黄色泡状的愈伤组织，1个半月后，泡状愈伤组织形成黄绿色瘤状突起，2个月后不断扩大连成一片，然后逐渐出现锥状突起，并形成红色的幼芽。在培养中发现，单独使用BA不能诱导叶片产生愈伤组织，只有同时使用生长素才能产生愈伤组织。在与BA配合使用的生长素中2，4-D诱导率较高，NAA其次，IBA的效果最差。在分化培养中，不同细胞分裂素对分化芽的效果不同，BA与ZT的效果较好，KT较差。在规模化生产中考虑到ZT的价格大大高于BA，所以一般使用BA进行分化及继代培养。另据研究结果表明，大量元素的全量与半量对红掌愈伤组织的诱导影响不大，但对芽分化有一定的影响，在相同激素水平下，1/2MS处理，不定芽的分化率显著高于MS处理，所以在不定芽的分化继代培养中，有人建议采用1/2MS培养亍Ｒ话愫煺平弦咨根，一定浓度的生长素均可促其生根。
另外，在红掌的组织培养中，采用浅层液体静置培养基，其增殖率远远高于固体培养基，且生长周期缩短，成本降低。因此，在进入大量增殖阶段后，即可改为液体培养。生根培养也可采用浅层液体静置培养的方法。
出瓶苗的过渡管理
当试管苗长出3~4条根时，即可出瓶移栽。出瓶前，先将试管苗移出培养室，打开瓶盖，置于通风明;的常温房间里，每天早、中、晚各喷水1次，以保持足够的湿度。5d后，将试管苗从瓶中移出，用清水洗净根系上的培养基，用0.5g/L的高锰酸钾蘸根消毒后，移栽到表土与腐殖土混合的基质上，淋水后，罩上透明塑料薄膜以保持空气湿度，10d后打开保湿罩，逐渐降低湿度并增强光照，30d后成活率可达到90%以上。
红掌试管苗移栽方法简单易行，对基质的要求不高，采用沙土、沙混表土或沙混黄土作为移栽基质均可达到较高的成活率，但从植株长势等方面来看，移栽在表土中的试管苗生长健壮，叶色浓绿，长势较好。红掌原产地经常雾雨不断，故性喜空气湿度高而又排水通畅的环境，喜阴，喜湿热。生长季节每日除浇水外，还要给植株喷雾。终年最低温度应保持在18~20℃。需清晨或傍晚的阳光，忌强烈日光。
