二、有效的培养方法

1、培养基配方

愈伤组织诱导培养基  MS+BA 2mg/L+NAA 0.2mg/L。

愈伤组织增殖及分化培养基  MS+BA 2mg/L+NAA 0.2mg/L。

生根培养基  MS（1/2MS）+NAA 0.1mg/L。

2、培养程序

（1）取材  花茎抽生停止，小花的苞片开始张开时，从花茎的中部切断，取带逅氲纳喜课外植体。

（2）灭菌  在自来水下将外殖体清洗干净，并用70%的酒精进行表面灭菌后，在0.1%的升汞溶液中灭菌15min，用无菌水充分漂洗后，切成0.8~1cm的小段进行接种。

（3）生长及分化  灭菌材料接种于愈伤组织诱导培养基中1周以后，在花切口断面诱导出无色透明至微白色的愈伤组织；生长速度先慢后快，2周以后，最初分化的愈伤组织长大到小麦粒大小，有少数愈伤组织表面呈浅绿色，用放大镜可以看到晶莹的愈伤组织已开始分化成微型小植株。在此培养基中继续培养20~30d，有的愈伤组织分化成小苗，有的则进行愈伤组织增殖，同时在一些较大幼苗的基部还会分化出少量的根，以后可在同样的培养基上通过小苗的增殖获得更多的小苗檀佑伤组织上分化出来的小苗叶片，在诱导培养基上，能够诱导出愈伤组织并再生小植株，通过花茎和无菌苗小叶片的重复培养，可在较短的时间内培养出大量的组培苗。

（4）生根培养  将获得的再生小苗，转入生根培养基中，半个月后开始长根，1个月可以出瓶移栽。

三、质量标准及调控技术

出瓶的质量标准是苗高2cm以上，有3~5条根系，苗单生，有正常叶片3~4片。在培养过程中，可以参照同属其他作物的组培方法，从培养基、激素种类和浓度、培养环境等几个方面来进行质量调控，通过添加椰子乳，用KT代替BA等措施来克服使用BA而s成的玻璃化和丛生问题，有人使用MS+KT1mg/L进行试验，愈伤组织和不定芽的分化的效果更好。

四、出瓶苗的过渡管理

将小苗从瓶子中取出，洗去琼脂，并用灭菌剂浸泡片刻，然后移栽于经过灭菌的蛭石中。前期加强遮阴，注意保湿，但土壤不能太湿，否则会引起烂苗和死亡，以后逐渐增加光照，适当降低湿度，并进行叶面喷肥，过渡成活率可在90%以上。