二、有效的培养方法

1、培养基配方

诱导培养基  MS。

增殖培养基  MS+BA 4mg/L+NAA 1mg/L+IAA 1mg/L。

生根培养基  MS+IBA 0.1mg/L。

2、培养程序

（1）取材  以无病虫害、生长健壮，约具有10片叶的当年生植株作为取材母株。

（2）灭菌  将所选取的外植体在自来水下，边冲洗边剥去外层老叶，取其保留1~2cm幼嫩叶梢的短缩茎，在超净工作<内，用70%的酒精浸泡15s，然后用加有1~2滴吐温20的0.1%的升汞消毒液浸泡灭菌10min，无菌水清洗6~8次，将短缩茎纵切成4~6块，接种至诱导培养基上。

（3）生长及分化  在诱导培养基上经过20d左右的培养，外植体侧芽开始萌动。接种30d后，侧芽长至1~2cm，将其切下，在解剖镜下剥出1~2mm长的茎尖，转入增殖培养基中进行继代增殖。30d后，即可得到10~15个不定芽的丛生芽。以后将所增殖的丛生芽不断分割，使用相同的培养基进行继代增殖，即可获得大量的丛生芽，平均增殖系数达到5倍。

（4）生根培养  将增殖后长至3cm左右的丛生芽切割成单芽，转入生根培养基中，15d后开始生根，1个月后苗高5cm左右，平均每株苗可有4~5条2cm左右的根。

三、质量标准及调控技术

在花叶兰的培养程序中，比较困难的环境是在培养的起始阶段，接入的外植体容易发生褐化现象。可加快外植体的转换速度，将其不断转入新鲜培养基中，或者在培养基内添加0.1%的活性炭来防止和减轻褐变。在培养基的配制和培养环境的调整过程中，要严格管理和把关，确保符合所要求的条件。光照强度可适当高一些，达到3000lx，这样花叶兰瓶苗的生长会更快。在有条件的情况下，可进行分生组织培养和热处理脱毒，通过病毒检测选择脱毒单株进行扩繁，生产脱毒种苗以提高种苗的质量。

四、出瓶苗的过渡管理

将根长为2cm，高5cm的完整植株从培养基中取出，洗掉培养基后，用1000倍的多菌灵溶液浸泡2min后，进行移栽，移栽基质为园田土：椰糠：河沙：牛粪：4:1:1:1。移栽前浇透水，移栽后遮荫保湿，15d后去掉塑料薄膜并及时浇水，小苗成活率可达95%以上。在过渡管理中应注意的m项：根长要适中，避免根系过长，否则操作中容易伤根；种植前，将受污染的小苗剔除；种后相对湿度应保持在90%~95%，随后逐渐降低湿度，成活后保持60%~85%的相对湿度最有利于花叶兰的生长；小苗在移栽初期要特别注意水分m管理，基质和空气湿度不要过大，否则容易引起从小苗基部向上扩展的水浸状腐烂。

花叶兰属植物对环境条件适应性比较强，为强光照植物，在母本的栽培及小苗移栽的管理过程，要注意调控温度、水分条件，供给灌溉水的水质状况等。最适的栽培温度为18~22℃，生长期最适光照为30000~40000lx，但不能低于18000lx。夏季炎热需水多，可每天喷水1次，其他各季需水较少，可2~3d喷水一次。花叶兰的病虫害一般较少，较常见的有腐心病和干尾病，常因水分过多、水质中钙与钠含量过高、施肥过量或栽培基质排水不良等因素引起，在发病初期就要及时调控和加强防治。