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花药和花粉培养
发布时间:2015-06-15


花药和花粉培养都是指花粉在培养基上改变其正常发育和机能,不经受精发生细胞分裂,由单个花粉粒发育成完整植株的技术p

花粉粒的发育过程:

减数分裂

花粉母细胞─── →四分体→花粉粒(单核,n)     (单核期)

(2n)             (n)      LK

生殖细胞(n)  营养细胞(n)  (双核期,二核花粉粒)

LK

精子(n)  精子(n) (三核花粉粒)

花药培养(单雄生殖)

花药培养的一般程序

采花粉在单核期左右的花蕾或幼穗;

保湿条件下低温等预处理;

取出花药表面消毒;

将花药接种到适宜的培养基上,在适宜温度下培养(有时需短时预培养);

花粉胚或花粉愈伤组织发育到适当阶段后,转入植株再生培养基,形成花粉植株;

染色体加倍;

移入土壤栽培。

禾本科植物花粉植株的诱导一般过程:

花药

含有2,4-D (1~2mg/L)的诱导培养基,蔗糖浓度依植 种类不同而异(2~12%)

愈伤组织

↓10~15d,长到直径约1.5~2.0mm时

分化培养基:去掉2,4-D,加入(0.2mg/L)NAA和(1mg/L) KT

愈伤组织表面陆续出现绿色芽原基

芽原基萌发,长成绿色的芽

芽分化的同时或稍后,同一块愈伤组织的下部一般会有根的分化.

影响花药培养成牡囊蛩

2.1 材料的选择

亲本植株的基因型

亲本植株的生理状态

花粉的发育时期 :多数在单核期较易培养成功。

2.2  预处理

常用低温冷藏,可以提高诱导率.不同材料所需温度和时间不同。

还有离心、乙烯利、高温、甘露醇预处理等。

2.3  材料的表面消毒

常用条件:

漂白粉饱和液的上清液浸泡10~15min;

8~10%的安替福民水溶液浸泡5~10min;

0.1%升汞浸泡10min.

2.4 培养基

基本培养基常用:H(烟草)、N6(禾谷类)、C17和W14(小麦)、B5(油菜)、FHG(大麦)等。

与常规培养基相比:降低铵离子浓度,调整铵态氮和硝态氮的比例;有些用麦芽糖等代替蔗糖。

植物生长物质:不同植物、不同品种之间都可能有差异。(例1;例2)

多数禾本科植物:外源生长素,尤其2,4-D是促进花粉启动分裂、形成愈伤组织的必要条件。但细胞分裂素类不是必要条件。

其他: 多种维生素、氨基酸和其他有机附加物的添加常有利。有些花药培养中还使用活性炭等.

例1:不同浓度6-BA、NAA、KT、IAA配比对草莓花药诱导分化率的影响分析

例2:激素对瓜类花药培养的影响(贵州大学生科院)

2,4-D: 诱导率;6-BA; KT:分化率

2.5  培养方式

液体培养:液体培养基比琼脂培养基更适合于花药培养

双层培养

花药-花粉分步培养

条件培养基

2.6 培养条件:

温度: 接种后最初几天在较高温度下培养比较 有利。

光:愈伤p织诱导常以暗培养较好; 分化需要的光照长度和给光时间不同植物要求不同。

花粉植株的倍性及染色体加倍技术

3.1 花粉植株的倍性

花粉植株中倍性多样:n,2n,多倍体,非整倍体

出现二倍体的原因:主要是核内有丝分裂造成。和接种花粉的时期、培养基中激素的种类和水平、花粉植株的发生方式,以及愈伤组织继代培养时间的长短有关.

3.2 染色体加倍技术

利用上述自发的核内有丝分裂;

秋水仙素处理:浓度范围0.02~0.4%, 处理方式和部位及使用浓度和时间等随植物种类不同而异.

3.3 花粉植株倍性的鉴定

一般是对茎尖或砑庀赴进行染色体计数;也可用其他指标

操作实例:烟草花药培养

选用花粉处于单核晚期(单核靠边期)的花蕾

剥去花蕾萼片,消毒(70%的酒精10 s,饱和漂白粉上清液15~30min)

↓ˉ

剥去花冠,将花药接种到含有1%活嗵嫉H培养基上(+IAA0.1~0.5mg/L)

↓ˉ  26~28oC,适当照光

3周左右后药室开裂,可见乳黄嗟呐咦刺,见光后很快变绿

↓ˉ

胚状体逐渐发育成单倍体小苗

↓ˉ小苗长出3~4片真叶时

染色体加倍(0.4%的秋水仙碱水溶液浸泡小苗24~48h, 倾出药液,无菌水洗3次)

↓ˉ

将小苗分株移栽到T培养基上

小苗长出发达根系时移栽到花盆中(一周内用烧杯将小苗罩起)

2节 花粉培养(小孢子培养)

将花粉粒从花药中分离出来,进行人工培养,使花粉粒脱分化,进而发育成完整植株的一种技术.

属单细胞培养

1、 花粉培养的特点

可以排除花药培养中药壁、药隔和花丝等体细胞的干扰,便于实验结果的分析.

高效、节约.

数量多、单细胞、 单倍性和较高的同步性

2、花粉的分离

2.1 直接挤压

将已消毒的花药在液体培养基中用平头的玻璃棒反复挤压花药,挤出花粉。

2.2 压挤-过筛-清洗(挤压法;机械分离法 )

从花蕾中分离出花药

加蔗糖溶液或分离液,轻压花药,挤出花粉.

经合适孔径的细胞筛过滤入离心管

低速离心

花粉粒沉淀

弃上清液;重新加入蔗糖液,振荡重新悬浮花粉

再次离心,重复3~4次

最后一次用液体培养基代替蔗糖溶液.

上清液吸出后,加入一定量的液体培养基,

血球计数板计数,调整花粉密度,使达到105个/ml左右.

2.3 散落法(shed pollen method):

在进行花药的液体t浮培养时,花药会自动开裂,小孢子从花药裂口出散落到培养基中。及时将花药壁从培养瓶中取出,留下的花粉继续培养(水稻,大麦等)

分离的小孢子可以用密度梯度离心纯化。

3、花粉培养技术

3.1 预处理

与花粉培养类似,低温、高温等预处理后,可以提高一些植物小孢子培养的成功率。

3.2 培养基

与花药培养的类似                    激素含量

小麦小孢子:CHB 培养基(麦芽糖)

3.3 花粉培养的方式

直接培养

条件培养 (补充花药提取物)

哺养培养 (nurse culture;保育培养,看护培养)

微室培养

3.4 白化苗现象

白化苗产生的原因目前了解尚少

生理的?

遗传的?

4 操作实例  烟草花粉培养

花粉发育时期为单核晚期~双核初期的烟草花蕾3oC处理72h

↓ 无菌操作取出花药

接种到 (Nitsch) H培养基

↓ 28oC±1oC,光照,培p3d,

压挤-过筛-清洗的方法分离出花粉,使花粉密度达到7*105个/ml

↓ˉ

每瓶1ml分装入20ml的三角瓶

↓ 28oC±1oC,弱散射光

静止的薄层液体培养.

↓ 5~10d后

花粉脱分化形成细胞团

↓20~30d

细胞团发育成胚状体

↓ˉ

将子叶形的胚状体转接到H固体培养基上

↓一周后

胚状体发育成小植株

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